Никотин әчелеге

Wikipedia — ирекле энциклопедия проектыннан ([http://tt.wikipedia.org.ttcysuttlart1999.aylandirow.tmf.org.ru/wiki/Никотин әчелеге latin yazuında])
Навигациягә күчү Эзләүгә күчү
Никотин әчелеге
Химическая структура
Масса 123,032 м.а.б.[1]
Химик фурмула C₆H₅NO₂[1]
SMILES фурмуласы C1=CC(=CN=C1)C(=O)O[1]
Эрү температурасы 238 °C[2]
Куркынычсызлык классификациясе һәм билгеләнеше NFPA 704: гадәттән тыш хәлләргә җавап бирү өчен куркыныч матдәләр стандарт идентификацияләү системасы[d]
Установленная суточная доза 2 грамм[3]
Является активным ингредиентом в Niaspan[d][4], B3-500-Gr[d][4] һәм Niacor[d][4]
Международное непатентованное название ВОЗ nicotinic acid[5]
Нинди таксонда бар акыллы кеше[d][6][7][8], Angelica sinensis[d][9][10][11][…], Ajuga taiwanensis[d][12][13], Begonia nantoensis[d][14][15], Cassytha filiformis[d][16], кишечная палочка[d][17][18][19], Umbelopsis vinacea[d][20], Табак обыкновенный[d][21], Резуховидка Таля[d][22][23][24][…], Женьшень[d][25], Осина[d][26], Salmonella enterica[d][27][28], Trypanosoma brucei[d][29], Angelica acutiloba[d][11], Черимойя[d][30], Земляничное дерево крупноплодное[d][31], Aristolochia kaempferi[d][32], Artemia salina[d][33], Кат[d][34], Codonopsis pilosula[d][35], Кофе аравийский[d][36], Кофе конголезский[d][36], Дурман индийский[d][34], Дурман индейский[d][34], Дурман обыкновенный[d][34], Наперстянка шерстистая[d][34], Наперстянка пурпурная[d][34], Euphorbia lancifolia[d][37], кытай борчагы[38], лакрица[d][34], Hyoscyamus muticus[d][34], Nicotiana plumbaginifolia[d][39], Мак опийный[d][34], Петрушка кудрявая[d][40], Phycomyces blakesleeanus[d][41], борчак[42][43], бәрәңге[44], Кордицепс китайский[d][45], Бетелевая пальма[d][46], Эврикома длиннолистая[d][47], Galanthus trojanus[d][48], Kalanchoe spathulata[d][49], Pleurotus citrinopileatus[d][50], Drosophila melanogaster[d][51], Gloiopeltis furcata[d][52], Трутовик зонтичный[d][53], Nicotiana undulata[d][21], Kalanchoe integra[d][49], Aeromonas veronii[d][54], виноград культурный[d][55], Kalanchoe hybrida[d][49], Isotrema kaempferi[d][32], Kalanchoe deficiens[d][49], Lathyrus oleraceus[d][43][42], Euglena gracilis[d][56], Lotus japonicus[d][57][58], Cytospora chrysosperma[d][59], Valsa sordida[d][59], Saccharomyces cerevisiae[d][60] һәм Datura innoxia[d][34]
Дәвалау өчен кулланыла пеллагра[d][61] һәм familial hyperlipidemia[d][61]
Тәэсир итешә Hydroxycarboxylic acid receptor 1[d][62], Hydroxycarboxylic acid receptor 2[d][62] һәм Hydroxycarboxylic acid receptor 3[d][62]
MCN коды 2936.29.51
Commons-logo.svg Никотин әчелеге Викиҗыентыкта

Никотин кислотасы (ниацин) холестеринны киметүче препараттан гыйбарәт, аның берничә каршы йогынтысы бар, шуларга тире кызару, кычыту, косасы килү һәм эч авырту керә. Кайбер авыруларда КМШ'га охшаган, ләкин ФАГ'дә үтеп чыгусыз кистоз макулопатия үсеш ала.

Көненә 1,5 г-нан артык дозада макуляр үзгәрешләр күзәтелә, бу күрү үткенлегенең уртача кимүенә китерә һәм препарат туктатылганнан соң юкка чыга.

Искәрмәләр[үзгәртү | вики-текстны үзгәртү]

  1. 1,0 1,1 1,2 nicotinic acid
  2. Bradley J., Williams A., Andrew S.I.D. Lang Jean-Claude Bradley Open Melting Point Dataset // Figshare — 2014. — doi:10.6084/M9.FIGSHARE.1031637.V2
  3. https://www.whocc.no/atc_ddd_index/?code=C10AD02
  4. 4,0 4,1 4,2 RxNorm
  5. nicotinic acidEBI.
  6. Gardiner N. J., Lakshmanan M., Martínez V. S. et al. Recon 2.2: from reconstruction to model of human metabolism // MetabolomicsSpringer Science+Business Media, 2016. — ISSN 1573-3882; 1573-3890doi:10.1007/S11306-016-1051-4PMID:27358602
  7. Soga T. Physiological and environmental parameters associated with mass spectrometry-based salivary metabolomic profiles // MetabolomicsSpringer Science+Business Media, 2012. — ISSN 1573-3882; 1573-3890doi:10.1007/S11306-012-0464-Y
  8. Zimmermann R., Zechner R. Adipose tissue as a source of nicotinamide N-methyltransferase and homocysteine. // AtherosclerosisElsevier BV, 2008. — ISSN 0021-9150; 1879-1484doi:10.1016/J.ATHEROSCLEROSIS.2008.09.015PMID:18996527
  9. DP Z. Dong quai // Am. J. Chin. Med.World Scientific, 1987. — ISSN 0192-415X; 1793-6853doi:10.1142/S0192415X87000151PMID:3425569
  10. Upton R. Dong Quai — 2013. — doi:10.1201/B14669-29
  11. 11,0 11,1 SJ S., YS H., YP C. et al. Analysis and processing of Chinese herbal drugs; VI. The study of Angelicae radix. // Planta Med.Thieme Medical Publishers (Germany), 1987. — ISSN 0032-0943; 1439-0221doi:10.1055/S-2006-962742PMID:3671555
  12. Chan Y., Wu T., Kuoh C. S. et al. A new phytoecdysteroid from Ajuga taiwanensis. // Chemical & Pharmaceutical BulletinPharmaceutical Society of Japan, 2005. — ISSN 0009-2363; 1347-5223doi:10.1248/CPB.53.836PMID:15997147
  13. Chan Y., Wu T., Kuoh C. S. et al. A New Phytoecdysteroid from Ajuga taiwanensis. // ChemInformWiley Information Services GmbH, Fachinformationszentrum Chemie GmbH (FIZ CHEMIE Berlin), 2005. — ISSN 0931-7597; 1522-2667; 1431-5890doi:10.1002/CHIN.200550175
  14. Wu P., Lin F., Wu T. et al. Cytotoxic and anti-HIV principles from the rhizomes of Begonia nantoensis. // Chemical & Pharmaceutical BulletinPharmaceutical Society of Japan, 2004. — ISSN 0009-2363; 1347-5223doi:10.1248/CPB.52.345PMID:14993759
  15. Wu P., Lin F., Wu T. et al. Cytotoxic and anti-HIV Principles from the Rhizomes of Begonia nantoensis. // ChemInformWiley Information Services GmbH, Fachinformationszentrum Chemie GmbH (FIZ CHEMIE Berlin), 2004. — ISSN 0931-7597; 1522-2667; 1431-5890doi:10.1002/CHIN.200434239
  16. Tsai T., Wang G., Lin L. Vasorelaxing alkaloids and flavonoids from Cassytha filiformis. // J. Nat. Prod.American Chemical Society, 2008. — ISSN 0163-3864; 1520-6025doi:10.1021/NP070564HPMID:18217715
  17. Hove-Jensen B., Rosenkrantz T. J., Haldimann A. et al. Escherichia coli phnN, encoding ribose 1,5-bisphosphokinase activity (phosphoribosyl diphosphate forming): dual role in phosphonate degradation and NAD biosynthesis pathways // J. Bacteriol. / T. J. SilhavyBaltimore: ASM, 2003. — ISSN 0021-9193; 1098-5530; 1067-8832doi:10.1128/JB.185.9.2793-2801.2003PMID:12700258
  18. Styczynski M. P. Metabolic Profiling of Escherichia coli-based Cell-Free Expression Systems for Process Optimization // Ind. Eng. Chem. Res.American Chemical Society, 2019. — ISSN 0888-5885; 1520-5045doi:10.1021/ACS.IECR.9B03565PMID:32063671
  19. Lerman J. A., Nam H., Palsson B. Ø. et al. A comprehensive genome-scale reconstruction of Escherichia coli metabolism--2011. // Mol. Syst. Biol. / R. AebersoldEMBO, Wiley, 2011. — ISSN 1744-4292doi:10.1038/MSB.2011.65PMID:21988831
  20. AG S., JB G., DT W. Antifungal and antibacterial metabolites from a sclerotium-colonizing isolate of Mortierella vinacea // J. Nat. Prod.American Chemical Society, 1999. — ISSN 0163-3864; 1520-6025doi:10.1021/NP980411HPMID:10075797
  21. 21,0 21,1 Heim W. G., Sykes K. A., Hildreth S. B. et al. Cloning and characterization of a Nicotiana tabacum methylputrescine oxidase transcript. // PhytochemistryElsevier BV, 2006. — ISSN 0031-9422; 1873-3700doi:10.1016/J.PHYTOCHEM.2006.11.003PMID:17174363
  22. Saito K., Fukushima A., Kusano M. et al. Metabolomic correlation-network modules in Arabidopsis based on a graph-clustering approach // BMC Syst. Biol.BMC, Springer Science+Business Media, 2011. — ISSN 1752-0509doi:10.1186/1752-0509-5-1PMID:21194489
  23. Metz T. O., Kim Y., Pasa-Tolic L. Decreased abundance of type III secretion system-inducing signals in Arabidopsis mkp1 enhances resistance against Pseudomonas syringae // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. / M. R. Berenbaum[Washington, etc.], USA: National Academy of Sciences [etc.], 2014. — ISSN 0027-8424; 1091-6490doi:10.1073/PNAS.1403248111PMID:24753604
  24. Wurtele E. S., Saito K., Fukushima A. et al. Metabolomic Characterization of Knockout Mutants in Arabidopsis: Development of a Metabolite Profiling Database for Knockout Mutants in Arabidopsis // Plant Physiol.American Society of Plant Biologists, 2014. — ISSN 0032-0889; 1532-2548doi:10.1104/PP.114.240986PMID:24828308
  25. Gupta R. An Integrated Biochemical, Proteomics, and Metabolomics Approach for Supporting Medicinal Value of Panax ginseng Fruits // Front. Plant Sci.Frontiers Media, 2016. — ISSN 1664-462Xdoi:10.3389/FPLS.2016.00994PMID:27458475
  26. Sokołowska K., Niittylä T., Hvidsten T. R. et al. A metabolite roadmap of the wood-forming tissue in Populus tremula // New PhytologistLondon: Wiley-Blackwell, 2020. — ISSN 0028-646X; 1469-8137doi:10.1111/NPH.16799PMID:32648607
  27. Kim Y., Metz T. O., Adkins J. N. et al. Salmonella modulates metabolism during growth under conditions that induce expression of virulence genes // Mol. Biosyst.RSC, 2013. — ISSN 1742-206X; 1742-2051; 2515-4184doi:10.1039/C3MB25598KPMID:23559334
  28. Tian S., Wang C., Li Y. et al. The impact of slyA on cell metabolism of Salmonella Typhimurium: a joint study of transcriptomics and metabolomics // J. Proteome Res. / J. YatesAmerican Chemical Society, 2020. — ISSN 1535-3893; 1535-3907doi:10.1021/ACS.JPROTEOME.0C00281PMID:32969666
  29. Barrett M. P., Vincent I. M., Burgess K. et al. Untargeted metabolomics reveals a lack of synergy between nifurtimox and eflornithine against Trypanosoma brucei // PLOS Neglected Tropical Diseases / P. J. HotezPLoS, 2012. — ISSN 1935-2735; 1935-2727doi:10.1371/JOURNAL.PNTD.0001618PMID:22563508
  30. Chen C., Chang F., Teng C. et al. Cheritamine, A NewN-Fatty Acyl Tryptamine and Other Constituents from the Stems ofAnnona cherimola // Journal of the Chinese Chemical SocietyWiley-Blackwell, 2015. — ISSN 0009-4536; 0375-8745; 2192-6549doi:10.1002/JCCS.199900010
  31. M.L.C.M.M. Alarcão-E-Silva, A.E.B. Leitão, H.G. Azinheira et al. The Arbutus Berry: Studies on its Color and Chemical Characteristics at Two Mature Stages // J. Food Comp. Anal.Elsevier BV, 2001. — ISSN 0889-1575; 1096-0481doi:10.1006/JFCA.2000.0962
  32. 32,0 32,1 WU T., LEU Y., CHAN Y. Constituents of the Leaves of Aristolochia kaempferi. // Chemical & Pharmaceutical BulletinPharmaceutical Society of Japan, 2011. — ISSN 0009-2363; 1347-5223doi:10.1248/CPB.46.1624
  33. M. Gallagher, Brown W. D. Composition of San Francisco bay brine shrimp (Artemia salina) // J. Agric. Food Chem.USA: American Chemical Society, 1975. — ISSN 0021-8561; 1520-5118doi:10.1021/JF60200A008PMID:1141506
  34. 34,0 34,1 34,2 34,3 34,4 34,5 34,6 34,7 34,8 34,9 HEWITT W., VINCENT S. MICROBIOLOGICAL ASSAY: AN OVERVIEW — 2014. — doi:10.1016/B978-0-12-346445-3.50005-2
  35. Liu B., Qin F. Two New Triterpenoids from the Roots of Codonopsis pilosula // MoleculesMDPI, 2018. — ISSN 1420-3049; 1431-5157doi:10.3390/MOLECULES23020383PMID:29439445
  36. 36,0 36,1 S. Casal, Oliveira M. B., Ferreira M. A. Development of an HPLC/Diode-Array Detector Method for Simultaneous Determination of Trigonelline, Nicotinic Acid, and Caffeine in Coffee // Journal of Liquid Chromatography and Related TechnologiesMarcel Dekker, Taylor & Francis, 1998. — ISSN 1082-6076; 1520-572X; 0148-3919doi:10.1080/10826079808001267
  37. Jr R. F. A neglected Mayan galactagogue - ixbut (Euphorbia lancifolia). // J. Ethnopharmacol.Elsevier BV, 1982. — ISSN 0378-8741; 1872-7573doi:10.1016/0378-8741(82)90024-1PMID:7033669
  38. Vedrina-Dragojević I. Dynamics of the Biosynthesis of Niacin During Development to Maturity of Soybean Seed // Journal of Agronomy and Crop Science — 2008. — ISSN 0931-2250; 1439-037Xdoi:10.1111/J.1439-037X.1991.TB00948.X
  39. Manceau F., Fliniaux M., Jacquin-Dubreuil A. A high performance liquid chromatographic procedure for the analysis of tobacco alkaloids--Application to the evaluation of tobacco alkaloids in plants and cell suspension cultures // Phytochem. Anal.Wiley, 2007. — ISSN 0958-0344; 1099-1565doi:10.1002/PCA.2800030205
  40. Schwenen L., Komoßa D., Barz W. Metabolism and Degradation of Nicotinic Acid in Parsley (Petroselinum hortense) Cell Suspension Cultures and Seedlings // Z. Naturforsch. C Bio. Sci. / J. SeibelDe Gruyter, 2018. — ISSN 0939-5075; 1865-7125doi:10.1515/ZNC-1986-1-222
  41. Barrero A. F., Oltra J. E., Poyatos J. A. Acidic metabolites from Phycomyces blakesleeanus // PhytochemistryElsevier BV, 2003. — ISSN 0031-9422; 1873-3700doi:10.1016/0031-9422(96)00146-X
  42. 42,0 42,1 Tramontano W. A., Lynn D. G., Evans L. S. Trigonelline, nicotinic acid and nicotinamide in seedlings of Pisum sativum // PhytochemistryElsevier BV, 2002. — ISSN 0031-9422; 1873-3700doi:10.1016/S0031-9422(00)86960-5
  43. 43,0 43,1 Z. El-Hawary, El-Shobaki F. A. Vitamins content of fruits and vegetables in common use in Egypt // European Journal of NutritionSpringer Science+Business Media, 1977. — ISSN 1436-6207; 1436-6215; 0044-264X; 1435-1293doi:10.1007/BF02024787PMID:919638
  44. Bushway A. A., Bureau J. L., Bergeron D. et al. The nutrient and glycoalkaloid content of a new potato meal // American Journal of Potato ResearchSpringer Science+Business Media, 2008. — ISSN 1099-209X; 0003-0589; 1874-9380doi:10.1007/BF02854349
  45. Yang M., Kuo P., Hwang T. et al. Anti-inflammatory principles from Cordyceps sinensis // J. Nat. Prod.American Chemical Society, 2011. — ISSN 0163-3864; 1520-6025doi:10.1021/NP100902FPMID:21848266
  46. D.K. Holdsworth, R.A. Jones, R. Self Volatile alkaloids from Areca catechu // PhytochemistryElsevier BV, 2003. — ISSN 0031-9422; 1873-3700doi:10.1016/S0031-9422(98)00016-8
  47. Kuo P., Damu A. G., Lee K. et al. Cytotoxic and antimalarial constituents from the roots of Eurycoma longifolia. // Bioorganic & Medicinal ChemistryElsevier BV, 2004. — ISSN 0968-0896; 1464-3391doi:10.1016/J.BMC.2003.11.017PMID:14738962
  48. Viladomat F., Bastida J., Kaiser M. Antiprotozoal alkaloids from Galanthus trojanus // Phytochemistry LettersElsevier BV, 2011. — ISSN 1874-3900; 1876-7486doi:10.1016/J.PHYTOL.2011.05.008
  49. 49,0 49,1 49,2 49,3 Kuo P., Kuo T., Su C. et al. Cytotoxic principles and α-pyrone ring-opening derivatives of bufadienolides from Kalanchoe hybrida // TetrahedronElsevier BV, 2008. — ISSN 0040-4020; 1464-5416doi:10.1016/J.TET.2008.01.090
  50. Hu S. H., Liang Z. C., Chia Y. C. et al. Antihyperlipidemic and antioxidant effects of extracts from Pleurotus citrinopileatus // J. Agric. Food Chem.USA: American Chemical Society, 2006. — ISSN 0021-8561; 1520-5118doi:10.1021/JF052890DPMID:16536582
  51. Wilinski D., Freddolino P. L. Rapid metabolic shifts occur during the transition between hunger and satiety in Drosophila melanogaster // Nat. Commun. / J. HeberNPG, 2019. — ISSN 2041-1723doi:10.1038/S41467-019-11933-ZPMID:31492856
  52. Fang Z., Jeong S. Y., Jung H. A. et al. Anticholinesterase and antioxidant constituents from Gloiopeltis furcata. // Chemical & Pharmaceutical BulletinPharmaceutical Society of Japan, 2010. — ISSN 0009-2363; 1347-5223doi:10.1248/CPB.58.1236PMID:20823607
  53. Zhao Y. 1β-hydroxylfriedelin, a new natural pentacylic triterpene from the sclerotia of Polyporus umbellatus // Journal of Chemical Research — 2009. — ISSN 0308-2342; 1364-5560; 0308-2350; 1747-5198doi:10.3184/030823409X12562954717147
  54. Yu W., Li D., Li H. et al. Absence of tmRNA Increases the Persistence to Cefotaxime and the Intercellular Accumulation of Metabolite GlcNAc in Aeromonas veronii // Frontiers in cellular and infection microbiologyFrontiers Media, 2020. — ISSN 2235-2988doi:10.3389/FCIMB.2020.00044PMID:32185140
  55. Goufo P., Cortez I. Dataset of levels and masses of lipid species in healthy, asymptomatic and symptomatic leaves of vitis vinifera L. 'Malvasia fina' affected by ESCA complex disease // DIBElsevier BV, 2020. — ISSN 2352-3409doi:10.1016/J.DIB.2020.106469PMID:33204780
  56. He J., Liu C., Du M. et al. Metabolic Responses of a Model Green Microalga Euglena gracilis to Different Environmental Stresses // Frontiers in bioengineering and biotechnologyFrontiers Media, 2021. — ISSN 2296-4185doi:10.3389/FBIOE.2021.662655
  57. Udvardi M. K., Kopka J., Erban A. Mining for robust transcriptional and metabolic responses to long-term salt stress: a case study on the model legume Lotus japonicus // Plant, Cell and Environment / A. AmtmannWiley-Blackwell, 2009. — ISSN 0140-7791; 1365-3040doi:10.1111/J.1365-3040.2009.02047.XPMID:19781009
  58. Redestig H., Hannah M. A., Kopka J. et al. Integrative functional genomics of salt acclimatization in the model legume Lotus japonicus // The Plant JournalWiley-Blackwell, 2007. — ISSN 0960-7412; 1365-313Xdoi:10.1111/J.1365-313X.2007.03381.XPMID:18047558
  59. 59,0 59,1 Tian C. Phosphoproteomic and Metabolomic Profiling Uncovers the Roles of CcPmk1 in the Pathogenicity of Cytospora chrysosperma // Microbiology Spectrum — 2022. — ISSN 2165-0497doi:10.1128/SPECTRUM.00176-22
  60. Chen Y., Kasvandik S., Nielsen J. Proteome allocations change linearly with the specific growth rate of Saccharomyces cerevisiae under glucose limitation // Nat. Commun. / J. HeberNPG, 2022. — ISSN 2041-1723doi:10.1038/S41467-022-30513-2PMID:35595797
  61. 61,0 61,1 NDF-RT
  62. 62,0 62,1 62,2 IUPHAR/BPS Guide to PHARMACOLOGY

Чыганаклар[үзгәртү | вики-текстны үзгәртү]

  • Джек Кански. Клиник офтальмология. Системалаштырылган караш. / редакторлар: Еричева В.П.. — 2009. — Б. 944. — ISBN 83-7609-034-8.