CD63

Wikipedia — ирекле энциклопедия проектыннан ([http://tt.wikipedia.org.ttcysuttlart1999.aylandirow.tmf.org.ru/wiki/CD63 latin yazuında])
CD63
Нинди таксонда бар H. sapiens[d][1]
Кодирующий ген CD63[d][1]
Молекулярная функция связывание с белками плазмы[d][2][3][4]
Күзәнәк компоненты часть мембраны[d][5][5], multivesicular body[d][5], эндосома[d][5], multivesicular body membrane[d][6][7], мембрана[d][5], late endosome membrane[d][5][8], intrinsic component of plasma membrane[d][2][8], меланосома[d][5], күзәнәк мембраны[d][5][9][10][…], часть клеточной мембраны[d][11], endosome lumen[d][12], multivesicular body, internal vesicle[d][13][14], lysosomal membrane[d][11][15][16][…], внеклеточная область[d][5], platelet dense granule membrane[d][5], лизосома[d][5][5], endosome membrane[d][12][17], экзосома[d][15][18][19][…], внеклеточное пространство[d][20], поверхность клетки[d][5][21], azurophil granule membrane[d][5], late endosome[d][5], lysosomal membrane[d][22][5][8][…], часть клеточной мембраны[d][22][23], multivesicular body membrane[d][13][24] һәм экзосома[d][5][25][26][…]
Биологический процесс positive regulation of receptor internalization[d][8], platelet degranulation[d][5], pigment granule maturation[d][14], endosome to melanosome transport[d][14], protein transport[d][5], positive regulation of integrin-mediated signaling pathway[d][2][8], cell-matrix adhesion[d][8], миграция клеток[d][8], neutrophil degranulation[d][5], перенос[d][15], пигментация[d][5], pigment cell differentiation[d][5], regulation of vascular endothelial growth factor signaling pathway[d][8][5], cell surface receptor signaling pathway[d][23], миграция клеток[d][8][23], positive regulation of endocytosis[d][23], regulation of potassium ion transmembrane transport[d][21] һәм regulation of vascular endothelial growth factor signaling pathway[d][8][5][23]
Изображение Gene Atlas

CD63 (ингл. ) — аксымы, шул ук исемдәге ген тарафыннан кодлана торган югары молекуляр органик матдә.[27][28]

Искәрмәләр[үзгәртү | вики-текстны үзгәртү]

  1. 1,0 1,1 UniProt
  2. 2,0 2,1 2,2 Kim H. C. Identification of CD63 as a tissue inhibitor of metalloproteinase-1 interacting cell surface protein // EMBO J.NPG, 2006. — ISSN 0261-4189; 1460-2075doi:10.1038/SJ.EMBOJ.7601281PMID:16917503
  3. Ivanusic D., Eschricht M., Denner J. Investigation of membrane protein-protein interactions using correlative FRET-PLA // BioTechniquesFuture Science Ltd, 2014. — ISSN 0736-6205; 1940-9818doi:10.2144/000114215PMID:25312088
  4. Foster L. J., Hardwidge P. R., Finlay B. B. The pathogenic E. coli type III effector EspZ interacts with host CD98 and facilitates host cell prosurvival signalling // Cellular MicrobiologyWiley-Blackwell, 2010. — ISSN 1462-5814; 1462-5822doi:10.1111/J.1462-5822.2010.01470.XPMID:20374249
  5. 5,00 5,01 5,02 5,03 5,04 5,05 5,06 5,07 5,08 5,09 5,10 5,11 5,12 5,13 5,14 5,15 5,16 5,17 5,18 5,19 5,20 5,21 5,22 5,23 GOA
  6. Möbius W., Stoorvogel W. Proteomic and biochemical analyses of human B cell-derived exosomes. Potential implications for their function and multivesicular body formation // J. Biol. Chem. / L. M. GieraschBaltimore [etc.]: American Society for Biochemistry and Molecular Biology, 2003. — ISSN 0021-9258; 1083-351X; 1067-8816doi:10.1074/JBC.M207550200PMID:12519789
  7. Riezman H., Blom T., Li S. et al. LAPTM4B facilitates late endosomal ceramide export to control cell death pathways // Nature Chemical BiologyNPG, 2015. — ISSN 1552-4450; 1552-4469doi:10.1038/NCHEMBIO.1889PMID:26280656
  8. 8,00 8,01 8,02 8,03 8,04 8,05 8,06 8,07 8,08 8,09 König C., Kroon J., Thijssen V. L. et al. Tetraspanin CD63 promotes vascular endothelial growth factor receptor 2-β1 integrin complex formation, thereby regulating activation and downstream signaling in endothelial cells in vitro and in vivo // J. Biol. Chem. / L. M. GieraschBaltimore [etc.]: American Society for Biochemistry and Molecular Biology, 2013. — ISSN 0021-9258; 1083-351X; 1067-8816doi:10.1074/JBC.M113.468199PMID:23632027
  9. Fitter S. Characterisation of the mouse homologue of CD151 (PETA-3/SFA-1); genomic structure, chromosomal localisation and identification of 2 novel splice forms // Biochim. Biophys. ActaElsevier BV, 1998. — ISSN 0006-3002; 1878-2434doi:10.1016/S0167-4781(98)00034-7PMID:9602068
  10. B. Gwynn, Eicher E. M., Peters L. L. Genetic localization of Cd63, a member of the transmembrane 4 superfamily, reveals two distinct loci in the mouse genome // Genomics / A. EngelAcademic Press, Elsevier BV, 1996. — ISSN 0888-7543; 1089-8646doi:10.1006/GENO.1996.0375PMID:8661157
  11. 11,0 11,1 Metzelaar M. J., Wijngaard P. L., Peters P. J. et al. CD63 antigen. A novel lysosomal membrane glycoprotein, cloned by a screening procedure for intracellular antigens in eukaryotic cells // J. Biol. Chem. / L. M. GieraschBaltimore [etc.]: American Society for Biochemistry and Molecular Biology, 1991. — ISSN 0021-9258; 1083-351X; 1067-8816PMID:1993697
  12. 12,0 12,1 Degeest G., Coomans C., Geeraerts A. et al. Syndecan-syntenin-ALIX regulates the biogenesis of exosomes // Nat. Cell Biol.NPG, 2012. — ISSN 1465-7392; 1476-4679doi:10.1038/NCB2502PMID:22660413
  13. 13,0 13,1 Riezman H., Blom T., Li S. et al. LAPTM4B facilitates late endosomal ceramide export to control cell death pathways // Nature Chemical BiologyNPG, 2015. — ISSN 1552-4450; 1552-4469doi:10.1038/NCHEMBIO.1889PMID:26280656
  14. 14,0 14,1 14,2 Raposo G., Saftig P., Niel G. v. et al. The tetraspanin CD63 regulates ESCRT-independent and -dependent endosomal sorting during melanogenesis // Developmental CellElsevier BV, 2011. — ISSN 1534-5807; 1878-1551doi:10.1016/J.DEVCEL.2011.08.019PMID:21962903
  15. 15,0 15,1 15,2 GOA
  16. König C., Kroon J., Thijssen V. L. et al. Tetraspanin CD63 promotes vascular endothelial growth factor receptor 2-β1 integrin complex formation, thereby regulating activation and downstream signaling in endothelial cells in vitro and in vivo // J. Biol. Chem. / L. M. GieraschBaltimore [etc.]: American Society for Biochemistry and Molecular Biology, 2013. — ISSN 0021-9258; 1083-351X; 1067-8816doi:10.1074/JBC.M113.468199PMID:23632027
  17. Raposo G., Coumailleau F., Cohen-Tannoudji M. Over-expression of Rififylin, a new RING finger and FYVE-like domain-containing protein, inhibits recycling from the endocytic recycling compartment // Mol. Biol. Cell,American Society for Cell Biology, 2004. — ISSN 1059-1524; 1939-4586; 1044-2030doi:10.1091/MBC.E04-04-0274PMID:15229288
  18. Sinha A., Kislinger T. In-depth proteomic analyses of exosomes isolated from expressed prostatic secretions in urine // Proteomics / L. StimsonWiley, 2013. — ISSN 1615-9853; 1615-9861doi:10.1002/PMIC.201200561PMID:23533145
  19. Pisitkun T., Tchapyjnikov D., Knepper M. A. Large-scale proteomics and phosphoproteomics of urinary exosomes // Journal of the American Society of Nephrology / J. BriggsAmerican Society of Nephrology, 2008. — ISSN 1046-6673; 1533-3450doi:10.1681/ASN.2008040406PMID:19056867
  20. Thaysen-Andersen M., Loke I., Packer N. Human neutrophils secrete bioactive paucimannosidic proteins from azurophilic granules into pathogen-infected sputum // J. Biol. Chem. / L. M. GieraschBaltimore [etc.]: American Society for Biochemistry and Molecular Biology, 2015. — ISSN 0021-9258; 1083-351X; 1067-8816doi:10.1074/JBC.M114.631622PMID:25645918
  21. 21,0 21,1 Codina J., Li J., Dubose T. D. CD63 interacts with the carboxy terminus of the colonic H+-K+-ATPase to decrease [corrected plasma membrane localization and 86Rb+ uptake] // American Journal of Physiology: Cell Physiology — 2005. — ISSN 0363-6143; 1522-1563doi:10.1152/AJPCELL.00463.2004PMID:15647390
  22. 22,0 22,1 Metzelaar M. J., Wijngaard P. L., Peters P. J. et al. CD63 antigen. A novel lysosomal membrane glycoprotein, cloned by a screening procedure for intracellular antigens in eukaryotic cells // J. Biol. Chem. / L. M. GieraschBaltimore [etc.]: American Society for Biochemistry and Molecular Biology, 1991. — ISSN 0021-9258; 1083-351X; 1067-8816PMID:1993697
  23. 23,0 23,1 23,2 23,3 23,4 Livstone M. S., Thomas P. D., Lewis S. E. et al. Phylogenetic-based propagation of functional annotations within the Gene Ontology consortium // Brief. Bioinform.OUP, 2011. — ISSN 1467-5463; 1477-4054doi:10.1093/BIB/BBR042PMID:21873635
  24. Möbius W., Stoorvogel W. Proteomic and biochemical analyses of human B cell-derived exosomes. Potential implications for their function and multivesicular body formation // J. Biol. Chem. / L. M. GieraschBaltimore [etc.]: American Society for Biochemistry and Molecular Biology, 2003. — ISSN 0021-9258; 1083-351X; 1067-8816doi:10.1074/JBC.M207550200PMID:12519789
  25. Raposo G. Exosomal-like vesicles are present in human blood plasma // Int. Immunol.OUP, 2005. — ISSN 0953-8178; 1460-2377doi:10.1093/INTIMM/DXH267PMID:15908444
  26. Lucocq J. M., Powis S. J. Monitoring the Rab27 associated exosome pathway using nanoparticle tracking analysis // Exp. Cell. Res.Academic Press, Elsevier BV, 2012. — ISSN 0014-4827; 1090-2422doi:10.1016/J.YEXCR.2012.10.006PMID:23092844
  27. HUGO Gene Nomenclature Commitee, HGNC:29223 (ингл.). әлеге чыганактан 2015-10-25 архивланды. 18 сентябрь, 2017 тикшерелгән.
  28. UniProt, Q9ULJ7 (ингл.). 18 сентябрь, 2017 тикшерелгән.

Чыганаклар[үзгәртү | вики-текстны үзгәртү]

  • Степанов В.М. (2005). Молекулярная биология. Структура и функция белков. Москва: Наука. ISBN 5-211-04971-3.(рус.)
  • Bruce Alberts, Alexander Johnson, Julian Lewis, Martin Raff, Keith Roberts, Peter Walter (2002). Molecular Biology of the Cell (вид. 4th). Garland. ISBN 0815332181.(ингл.)